Главная | Обратная связь

Підготовка операційного поля

Попередня підготовка місця передбачуваного операційною розрізу (операційною поля) починається напередодні операції і включає загальну гігієнічну ванну, зміну білизни. В день операції проводять гоління волосся сухим способом безпосередньо в місці операційного доступу, потім шкіру протирають спиртом.

Перед хірургічним втручанням на операційному столі поле операції широко змащують 5% спиртовим розчином йоду. Безпосередньо місце операції ізолюють стерильною білизною і знов змащують 5% спиртовим розчином йоду. Перед накладенням і після накладення швів на шкіру її обробляють тим же спиртним розчином. Цей спосіб відомий як спосіб Гроссіха—Філончикова. Для обробки операційного поля використовують такі препарати йоду, як йодонат, бетадин.

При непереносимості йоду шкірою у дорослих і у дітей обробку операційною поля проводять 1% спиртовим розчином діамантового зеленого (спосіб Баккала).

Для обробки операційного поля використовують 0,5% спиртовий розчин гібітану (хлоргексидину біглюконату), як і для обробки рук хірурга перед операцією.

При екстреній операції підготовка операційного поля полягає в збривали волос, обробці шкіри 0,5% розчином нашатирного спирту, а потім одним з описаних вище способів.

Стерилізація

Стерилізація інструментів, перев'язувального матеріалу і білизни включає наступні основні постулати: 1 - предстерилізаційна підготовка матеріалу: II - укладання і підготовка до стерилізації: III - стерилізація: IV - зберігання стерильного матеріалу. Всі ці етапи виконуються відповідно до галузевого стандарту «Стерилізація і дезинфекція виробів медичного призначення».

Стерилізація інструментів.

Етап I передстерилізаційна підготовка. Її мета — ретельне механічне очищення інструментів, шприців, ін'єкційних голок, систем для трансфузії, видалення пірогенних речовин і знищення вірусу гепатиту. Персонал повинен працювати в гумових рукавичках.

Вживані, але неінфіковані інструменти ретельно миють проточною водою щітками в окремій раковині протягом 5 хв (інструменти, забруднені кров'ю, миють відразу, не допускаючи висихання крові) і потім на 15-20 хв замочують в одному із спеціальних миючих розчинів, підігрітому до 50°С. Шприци обробляють в розібраному вигляді.

Склад миючих розчинів: розчин Л - перигідролю 20 р. прального порошку (типу «Новина», «Прогрес», «Лотра» і ін.) 5 г, води 975 мл: розчин Бі — 2.5% розчину перекису водню 200 мл, прального порошку «Новина» 5 р. води 795 мл.

Після замочування інструменти миють в тому ж розчині йоржами, щітками (особливо ретельно обробляють замки, зубчики, насічки), потім протягом 5 хв обполіскують теплою водою і протягом I хв прополоскують у воді, що дистилює. Після цього інструменти і шприци поміщають в сухоповітряний стерилізатор при температурі 85 °С для висушування, після чого вони готові до стерилізації.

Інструменти і шприци, забруднені гноєм чи кишковим вмістом, заздалегідь перносять в емальовані ємності з 0,1% розчином діоциду або 5% розчином лізолу на 30 хв. Потім в цьому ж розчині їх миють йоржами, щітками, обполіскують проточною водою і опускають в один з миючих розчинів, проводячи подальшу обробку по описаній вище методиці.

Інструменти після операції, проведеної у хворого з анаеробною інфекцією, замочують на 1 год в спеціальному розчині, що складається з 6% розчину перекису водню і 0,5% розчину миючого засобу (пральний порошок), потім миють щіткою в тому ж розчині і кип'ятять 90 хв. Лише після цього інструменти готують до стерилізації так само як неінфіковані інструменти. Через I добу (час для проростання спор) їх піддають автоклавуванню або кип’ятінню.

 

Пункційні, ін'єкційні голки після вживання промивають за допомогою шприца теплою порожнистою, а потім 1% розчином натрію гідрокарбонату, канал голки прочитають мандреном, промивають 0,5% розчином нашатирного спирту. Після цього голку зі вставленим мандреном кип'ятять протягом 30 хв. в 2% розчині натрію гідрокарбонату, а через 8—12 год. - повторно в тій, що дистилює протягом 40 хв і висушують, після чого канат голки просушують шляхом продування ефіром або спиртом за допомогою шприца або гумової груші. Голки, забруднені гноєм, ретельно миють, просвіт їх промивають проточною водою; потім поміщають на I год у 5% розчин лізолу, додатково промиваючи лізолом канал за допомогою шприца або гумової груші, і піддають такій же подальшій обробці, як не забруднені гноєм голки.

Системи для трансфузійних лікарських речовин або крові вимагають ретельної обробки для попередження посттрансфузійних реакцій і ускладнень. У сучасних умовах використовують разові системи для трансфузії, стерилізовані в заводських умовах. Систему багаторазового використання відразу після переливання крові або лікарською) препарату розбирають - роз'єднують скляні частини, крапельницю і гумові грубки. ретельно промивають проточною водою, розминаючи пальцями гумову трубку (для кращого видалення залишків крові). Частини системи опускають на 2 год. в підігрітий до 60 °С спеціальний розчин, що містить 1% розчин натрію гідрокарбонату і 1% розчин нашатирного спирту. Потім частини системи промивають проточною водою і кип'ятять у воді, що дистилює, 30 хв, знов промивають водою, розминаючи гумові трубки, і повторно кип'ятять 20 хв у воді, що дистилює. Після цього систему вмонтовують і упаковують для стерилізації.

Гумові рукавички. Останнім часом частіше використовують рукавички разового користування, стерилізовані в заводських умовах. При необхідності повторного використання, рукавички, забруднені кров'ю, миють, не знімаючи з рук. проточною водою до повного видалення крові, просушують рушником і поміщають на 30 хв в 0,5% розчин нашатирного спирту або в миючий розчин (А або Б). Потім ретельно миють проточною водою, вивішують на мотузку для просушування, після чого упаковують для стерилізації.

Гумові рукавички, забруднені гноєм або кишковим вмістом, підлягають знищенню. При крайній необхідності їх миють в проточній воді і поміщають в миючий розчин на 45 хв, потім — в 5% розчин лізолу на 30 хв. миють в розчині лізолу, обполіскують проточною водою і упаковують для стерилізації. Ці рукавички можуть використовуватися для роботи в гнійній перев'язувальній.

Для повноти видалення крові з предмету, що пройшли предстерилізаційну обробку, використовують бензидинову пробу: на предмет наносять по 3 краплі 1% розчину бензидину і перекису водню. Появу синій-зеленого забарвлення указує на сліди крові, що залишилася на предметах. У тому випадку необхідна повторна обробка.

II етап Для стерилізації в сухожарових стерилізаторах інструменти поміщають в металеві коробки, укладаючи їх вертикально в один шар. Шприци в розібраному вигляді завертають в 2 шару спеціального щільного паперу. Кришки від коробок стерилізують поряд. Останнім часом в основному застосовуються шприци разового користування, стерилізовані в заводських умовах.

Для стерилізації парою під тиском в парових стерилізаторах (автоклавах) інструменти завертають у вафельний рушник або бавовняну тканину про виду пакету і укладають на металевий повне або сітку. Для конкретних типових операцій набір інструментів готують наперед (наприклад, для операцій на легені, серце, кістках, судинах), укладають на спеціальну сітку і завертають в простирадло у вигляді пакету.

Циліндр і поршень шприца укладають окремо в марлеві серветки і завертають в шматок бавовняної тканини у вигляді пакету, який поміщають в стерилізаційну коробку (бікс). При масовій стерилізації шприців в автоклавах (централізована стерилізація) використовують спеціальне укладання, зшите з бавовняної тканини, з кишенями. У кишені поміщають шприци в розібраному вигляді, поряд - голки і пінцет. У кожному укладанні міститься до 5 шприців. Укладання завертають в бавовняну пелюшку н виді пакету і поміщають в стерилізатор.

Сухі гумові рукавички пересипають тальком (зовні і всередині), викладають марлевими серветками, попарно завертають в серветку і укладають в окремий бікс.

Зібрані системи для переливання крові перевіряють на міцність гумових трубок, щільність з'єднання їх з скляними деталями і відповідність канюль павільйонам голки. Систему згортають у вигляді 2-3 кілець, не допускаючи перегину гумових трубок, завертають у велику марлеву серветку, потім — у вафельний рушник і укладають в бікси.

Етап III - стерилізація. Стерилізація інструментів, шприців (з відміткою на шприці 200 °С), голок, скляного посуду проводиться в сухо жарових шафах-стерилізаторах (мал. 4). Предмети вільно укладають на полицях стерилізатора в металевих коробках (при знятих кришках) і включають підігрів. При відкритих дверцях доводять температуру до 80-85°С протягом 30 хв. просушують — видаляють вологу з внутрішніх поверхонь шафи і предметів, що стерилізуються. Потім дверці закривають, доводять температуру до заданої (80 °С), підтримуючи її автоматично, і стерилізують протягом 60 хв. Після відключення системи підігріву і зниження температури до 70-50 °С відкривають дверці шафи і стерильним інструментом закривають кришками металеві коробки з інструментами. Через 15—20 хв. (після повного охолоджування стерилізатора) камеру розвантажують.

При роботі з сухо жаровими стерилізатором необхідно дотримувати заходи безпеки: апарат повинен бути заземлений, після закінчення стерилізації слід відкривати двері шафи тільки при зниженні температури до 70-50 с. Забороняється користуватися несправним апаратом.

Стерилізацію інструментів, шприців, систем для переливання крові можна проводити в паровому стерилізаторі (автоклаві) (мал. 5). Упаковані предмети укладають в стерилізаційну камеру. Сіли упаковки укладені в бікси, то їх решітки винні був, відкриті. Бікси або інші упаковки укладають вільно, щоб пара розподілялася рівномірно.

Хірургічні інструменти і шприци стерилізують протягом 20 хв. при 2атм, що відповідає температурі 132,9 °С. Час почата стерилізації відлічують з моменту досягнення відповідного тиску. Гумові рукавички, системи для переливання крові, гумові дренажні трубки стерилізують при 1,1 атм (температура пари 120 °С) протягом 45 хв. При розвантаженні автоклаву закривають отвору в біксах.

Мал. 5. Паровий стерилізатор (автоклав), схема його пристрою.

а - вигляд збоку; б - вигляд спереду; I - термометр, 2 манометр; 3 - джерело тепла; 4 ввідний кран; 5 - випускний кран; 6 зовнішня стінка стерилізатора; 7 - внутрішня стінка стерилізатора.

I атм=1,013 105 Па.

Методи стерилізації в сухо жарових і парових стерилізаторах слід розглядати як основні. Метод стерилізації кип'ятінням застосовується в невеликих лікувальних установах, де немає централізованої стерилізаційної. Використовують стаціонарні або портативні електричні кип'ятильники, у яких можна стерилізувати інструменти, шприци, голки, предмети з скла, гумові дренажі, катетери, рукавички.

В кип'ятильник наливають рідину, що дистилює, для підвищення температури кипіння води і руйнування обідки бактерій додають 20 г натрію гідрокарбонату натрію I л води (1% розчин). На дно кип'ятильника укладають тонкий простьобаний шар вати з марлею, щоб випадні солі у вигляді накипу осідали на нім, а не на інструментах.

Інструменти в розібраному вигляді укладають на спеціальні сітки і опускають гачками на дно кип'ятильника, залишаючи ручки гачків зовні, і закривають кип'ятильник кришкою. Час стерилізації – 40хв з моменту закипання воли. Після закінчення стерилізації сітку з інструментами i витягують гачками, гавкають стекти воді і переносять на спеціальний столик, покритий стерильним простирадлом, складеним в 4 шаруючи. Операційна сестра розкладає інструменти на великому операційному столі.

Шприци і голки стерилізують окремо від інструментів, у розібраному вигляді (кип'ятінням у воді, що дистилюють, без додавання гідрокарбонату натрію), 45 хв. Шприци і голки дня спинномозкової пункції і внутрішньовенних вливань кип'ятять у воді, що двічі дистилюється, без додавання гідрокарбонату натрію.

Інструменти, шприци і голки, забруднені гноєм, каловими масами, після спеціальної попередньої обробки стерилізують кип'ятінням протягом 90 хв. в окремому кип'ятильнику.

Інструменти, шприци і голки, вживані у хворих з газовою гангреною, підлягають ретельній обробці і подальшій дробовій стерилізації кип'ятінням. Їх кип'ятять в протягом I год., витягують з кип'ятильника і залишають при кімнатній температурі на 12—24 год. (для проростання спор), а потім повторно стерилізують кип'ятінням протягом 1 год. (дробова стерилізація).

Основний метод стерилізації виробів з гуми (дренажі, катетери, рукавички) - автоклавування. У виняткових випадках їх піддають кип’ятінню протягом 15 хв.

Стерилізацію інструментів і предметів, що не підлягають термічній обробці (ендоскопи, торакоскопи, лапароскопії, апарати або блоки апаратів для штучного кровообігу, гемосорбції), здійснюють в спеціальному газовому стерилізаторі ГПД-250. Предмети для стерилізації перешкодять в герметичну стерилізаційну камеру (мал. 6). Час експозиції - 16 год. при температурі 18^о С Стерилізації може проводитися також сумішшю окису етилену і броміду метилену при температурі 55^о С протягом 6 год.

Стерилізація інструментів і оптичних апаратів (лапароскоп, торакоскоп) може бути проведена в спиртному розчині хлоргексидину і первомуру. При такій стерилізації (хімічними засобами) застосовуються металеві коробки з кришками, що попереджає випаровування препарату і забруднення повітря приміщень; за відсутності спеціального посуду використовують емальовану або скляну. Інструменти заливають розчином (щоб він повністю покривав їх) і закривають кришкою.

Мал. 6. Камера для газової стерилізації.

У екстрених випадках, коли неможливо забезпечити стерилізацію інструментів жодним з вказаних способів, використовують метод обпалення. У металевий таз або лоток наливають 15-20 мл. спирту, декілька інструментів укладають на дно і поливають спиртом. Метод обпалювання недостатньо надійний, пожежо- і вибухонебезпечний (наявність кисню, пари наркотичних газів в повітрі приміщенні), тому до нього вдаються у виняткових випадках, строго дотримуючи заходи пожежної безпеки.

Ріжучі інструменти (скальпелі, ножиці) при стерилізації звичайними методами затупляються, тому її проводять практично без термічної обробки. Після підготовки перед стерилізації інструменти занурюють в 96% етиловий спирт на 30 хв. або в потрійний розчин на 3 год. Допускається лише короткострокове кип'ятіння ріжучих інструментів. Скальпелі укладають в окрему сітку, їх леза обгортають марлею і кип'ятять без додавання гідрокарбонату натрію протягом 40 хв. потім поміщають в 46% етиловий спирт на 30 хв.

Етап IV зберігання стерильного матеріалу. Стерильний матеріал зберігають в спеціальному приміщенні. Не допускається зберігання в одному приміщенні нестерильних і стерильних матеріалів. Стерильність матеріалу в біксах (якщо вони не відкривалися) зберігається протягом 48 год. Якщо матеріали були помішані в полотняні упаковки (рушники, простигни, пелюшки) і для стерилізації укладені в бікси (наприклад, системи для переливання крові, гумові дренажі, шприци). вони можуть зберігатися в цих біксах до 3 діб. При централізованій стерилізації шприци зберігають стерильність протягом 25 днів.

Контроль стерильності

Контроль стерильності матеріалу і режиму стерилізації в автоклавах проводиться прямим і непрямим способами. Прямий спосіб — бактеріологічний; посів з перев'язувального матеріалу і білизни або використання бактеріологічних тестів. Посів проводять таким чином: у операційній розкривають бікс, маленькими шматочками марлі, зволоженої ізотонічним розчином хлориду натрію, кілька разів проводять по білизні, після чого шматочки марлі опускають в пробірку, яку направляють в бактеріологічну лабораторію.

Для бактеріологічних тестів використовують пробірки з відомою спороносною непатогенною культурою мікроорганізмів, які гинуть при певній температурі. Пробірки вкладають углиб бікса, а після закінчення стерилізації витягують і направляють в лабораторію. Відсутність зростання мікробів свідчить про стерильність матеріалу. Цей тест проводять раз на 10 днів.

Непрямі способи контролю стерильності матеріалу застосовують постійно при кожній стерилізації. Для цього використовують речовини з певною точкою плавлення: бензойну кислоту (120 °С). резорбції (119 °С), антипірин (110 °С). Ці речовини випускаються в ампулах. Їх застосовують також в пробірках (по 0,5 г), закритих марлевою пробкою. У бікс між шарами матеріалу, що стерилізується, закладають 1 - 2 ампули. Розплавлення порошку і перетворення його суцільно масу указують на те. що температура в біксі була рівна точці плавлення контрольної речовини або перевищувала її. Для контролю режиму стерилізації в сухо жарових стерилізаторах використовують порошкоподібні речовини з вищою точкою плавлення: аскорбінову кислоту (187—192 °С), янтарну кислоту (180—184°С ), пілокарпіну гідрохлорил (200°С ), тіосечовину (I20 °С).

Об'єктивнішою з непрямих методів контролю режиму стерилізації є термометрія. У кожен бікс між матеріалом, що стерилізується, укладають I -2 термометра. Їх показники відображають максимальну температуру, але не указують час експозиції (протягом якого періоду ця температура підтримувалася в біксі), у зв’язку з чим і цей метод не виключає прямого контролю стерильності з використанням бактеріологічних тестів.

Стерилізація апаратів для інгаляційного наркозу

Апарати для штучної вентиляції легенів і інгаляційною наркозу можуть бути причиною перехресною інфікування хворих і розповсюдження внутрілікарняної інспекції. Інфікування дихальних шляхів хворих чревате розвитком в післяопераційному періоді запальних ускладнень, пневмонії, бронхіту, трахеїту, фарингіту. У зв'язку з цим знезараження анестезіологічної і дихальної апаратури - один з важливих заходів асептики, направлене на попередження контактного і інгаляційного інфікування дихальних шляхів хворого.

Для попередження подібних ускладнень необхідно виконувати наступні основні рекомендації.

1. Ендотрахеальні трубки повинні бути разового користування, стерилізація їх повинна проводитися холодним способом в заводських умовах.

2. Після наркозу, проведення штучної вентиляції легенів апарати, елементи дихального контуру піддаються обробці антисептичними хімічними засобами. Апарати обробляють в зібраному вигляді. Може бути використаний 0,5% спиртний розчин хлоргексидину біглюконату: 1 мл. 20% водного розчину хлоргексидину розчиняють в 40 мл. 96% етилового спирту. Суміш заливають у випарник наркозного апарату або зволожувач апарату для штучної вентиляції. Вентиляцію проводять по напівзакритому контуру протягом I год. при швидкості газовідтоку 2 л/хв. Потім залишки антисептика видаляють, і апарат провітрюють протягом 15 хв. по напіввідкритому контуру.

Як антисептик в подібних ситуаціях можна використовувати 40% водний розчин формальдегіду (форма-тин). Для цього у випарник або зволожувач затівають 100 мл. формаліну і проводять вентиляцію протягом 20 хв. Потім видаляють залишки формаліну, заливають розчин нашатирного спирту і продовжують вентиляцію до повного зникнення запаху аміаку.

Для стерилізації апаратів в зібраному вигляді можна застосувати газовий метол (з використанням окислу етилену) або УФ-опромінення.

3. Якщо апарати були застосовані у хворих з гнійними захворюваннями, туберкульозом легких або дихальних шляхів, проводять розбирання дихального контуру

(знімають шланги, приєднувальні елементи, кришки клапанних коробок, дихальний влучний, адсорбер). Всі деталі обов'язково промивають під струменем теплої води, потім замочують у гарячому миючому розчині Л або Б (див. Стерилізація інструментів) на 15 хв., В цьому ж розчині кожну деталь миють ватно-марлевим тампоном протягом 30 хв., після чого прополіскують проточною, а потім водою, що дистилює. Власне стерилізаційну обробку деталей проводять 0.5% водним розчином хлоргексидину, поміщаючи їх в місткості на 311 хв. або 3% розчином перекису водню (80 хв.), або 3% розчином формальдегіду (30 хв.). У останньому випадку при інфікуванні мікобактеріями туберкульозу експозицію збільшують до 90 хв. Оптимальний варіант — використання в подібних ситуаціях пластикових шлангів, масок одноразового користування.

Після обробки антисептиком літали ретельно промивають стерильною водою протягом 10 хв. сушать і зберігають в асептичних умовах до використання.

Стерилізація ендоскопічної апаратури

Проблема інфекції при ендоскопічних дослідженнях стоїть гостро у зв'язку з небезпекою "зараження хворих і персоналу вірулентними мікроорганізмами.

Основними етапами стерилізації ендоскопічних приладів і інструментів є їх механічне очищення, промивання, передстерилізаційна обробка і стерилізація, просушування і зберігання.

Для очищення ендоскопів використовують розчин А або Б (див. Стерилізація інструментів).

Після закінчення ендоскопічного дослідження з ендоскопа негайно видаляють забруднення (шлунковий, кишковий сік, понизь, кров і ін.) механічним шляхом з використанням миючих засобів (розчин А або Б): із зовнішньої поверхні - е допомогою тканинних серветок, з каналів (біопсії, операційного) - спеціальною щіткою, а також шляхом подачі в них достатньої кількості повітря, води або розчину нейтрального мила; жорсткі ендоскопи перед очищенням розбирають на ті, що комплектують літали.

Для обробки ендоскопів застосовують 0,5% водний або спиртний розчин хлоргексидину біглюконат, 70% етиловий спирт, 2,5% розчин альдегіду, препарат «Сайдекс», 3% і 6% розчини перекису водню при температурі 20+-2 °С.

Окрім методу занурення, можливо також 3-кратне протирання серветками зовнішньої поверхні робочої частини ендоскопа (послідовно, спочатку однією серветкою, інтенсивно змоченою в антисептичному розчині, потім, після заповнення каналів ендоскопа розчином на 15 хв. - інший і третьою).

Частини ендоскопа обробляють розчинами антисептиків шляхом занурення і емальовану або скляну місткість, закриту кришкою, так само занурювати деталі жорстких ендоскопів (за винятком оптичних частин приладів і гнучких частин фіброендоскопів). Останніми роками з'явилися нові, так звані над герметичні моделі фіброскопів, які можна повністю занурювати в антисептичний розчин. Канали заповнюють шанований розчином з допомогою шприца або електровідсмоктування.

Розроблені спеціальні установки для передстерилізаційної очищення і стерилізації гнучких ендоскопів, що розрізняються об'ємом дезинфікуючого засобу, що заливається в спеціальну ванну.

Залишки антисептичних засобів видаляють з ендоскопічного устаткування за допомогою тієї, що дистилює воли, пропускаючи її через канали ендоскопа і обмиваючи його зовні. Потім шляхом неодноразової подачі повітря через канали ендоскопа видаляють залишки води.

Стерилізацію ендоскопічної апаратури можна проводити в камері для газової стерилізації з використанням окислу етилену або суміші окислу етилену і броміду метилену (див. Стерилізація інструментів}.

Ендоскопи, поміщені в стерильні мішки з щільної бавовняної тканини, зберігаються у вертикальному положенні в спеціальних шафах.

 

ОПЕРАЦІЯ

 

Операція - механічна дія на тканини і органи з лікувальною або діагностичною метою.

 

Класифікація:

 

Операції бувають діагностичні і лікувальні.

 

Діагностичні – біопсія (Рис. 1), пункція порожнин,, лапароскопія, діагностична лапаротомія, зондування порожнин серця.

 

Рис 1. Біопсія

 

Лікувальні - всі операції, направлені на усунення патологічного вогнища: апендектомія, холецистектомія, резекція шлунка і ін.